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STEMCELL Technologies STEMdiff STEMdiff Blood Vessel Organoid Kit

  • 研究用

STEMdiff™ Blood Vessel Organoid Kit(ST-100-0651)は、ヒト多能性幹細胞(hPSC)から再現性高く効率的に血管オルガノイドを作製するための培地です。96ウェルフォーマットでのハイスループットスクリーニングも可能で、作製したオルガノイドは血管組織の修復・再生の研究、血管疾患のin vitroモデル研究などに利用できます。

本品で作製した血管オルガノイドは、広範囲で生理学的に関連した血管ネットワークと、内皮細胞-周皮細胞間の強力な相互作用を発達させます。この血管オルガノイドには、CD31+/CD34+/CD144+/KDR+ 内皮細胞とPDGFR-β+/CD146+/SMA+/NG-2+ 周皮細胞が含まれます。血清スクリーニングや培養条件の検討をせずに、簡易なプロトコールでオルガノイドを作製できるため下流の実験により多くの時間を費やせます。

本品は、hPSC維持培地のmTeSR™ PlusまたはmTeSR™1と併せて使用することで、hPSCからオルガノイドへの移行が簡単になります。本品に含まれている、hPSC由来血管オルガノイドの成熟に必要なSTEMdiff™ Blood Vessel Organoid Maturation Medium(ST-100-0658)は、別途単品でも購入いただけます。
hPSCを内皮細胞に分化させるには、STEMdiff™ Endothelial Differentiation Kit(ST-08005)をご利用ください。

2018/05/14 12:00の製品情報

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本製品は研究目的にのみ使用し、人や動物の医療用・臨床診断用・食品用としては使用しないようにご注意ください。

製品の特長

STEMdiff™ Blood Vessel Organoid Kitをもちいて、ヒトES/iPS細胞から血管オルガノイドを分化誘導できます

  • 疾患モデリングや創薬に理想的な、生理学的関連性の高い3次元の血管オルガノイドを作製します
  • hPSC由来オルガノイドの効率的な作製に最適化された試薬と、標準化プロトコールを提供します
  • 創薬または薬剤試験用96ウェルフォーマットへのハイスループット拡張性があります
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FIGURE 1. STEMdiff™ Blood Vessel Organoid Kit Protocol
mTeSR™1-maintained hPSCs are seeded as single cells at 0.2 - 0.4 x 106 cells/well and mTeSR™ Plus- maintained hPSCs are seeded as single cells at 0.1 - 0.2 x 106 cells/well in 6-well ultra-low attachment plates in STEMdiff™ Blood Vessel Organoid Aggregation Medium, then incubated at 37°C for 1 or 2 days. Differentiation is then initiated by replacing the medium with STEMdiff™ Blood Vessel Organoid Mesoderm Medium and continuing incubation for 3 days. On day 4, vascular induction is initiated by replacing the medium with STEMdiff™ Blood Vessel Organoid Vascular Induction Medium, then incubating at 37°C for 2 days. Vascular aggregates are then embedded in a Matrigel®/collagen sandwich; aggregates sprout into vascular networks and mature into stable blood vessels when grown in STEMdiff™ Blood Vessel Organoid Maturation Medium for 5 days. Percentage of endothelial cells (CD31+ and CD144+) and pericytes (CD140b+) was evaluated via flow cytometry. Formation of lumen and 3D organization of endothelial cells and pericytes were analyzed using a confocal microscope.

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